Ectomyelois ceratoniae zeller

Ectomyelois ceratoniae zeller
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1- Présentation

La pyrale des dattes Ectomyelois ceratoniae (DOUMANDJI, 1981; DOUMAND- JIMITICHE,1983; IDDER, 1984; RAACHE, 1990 ; HADDAD, 2000; SAGGOU, 2001)

est considérée à l’heure actuelle comme étant le déprédateur le plus redoutable de la datte et constitue une contrainte principale à l’exportation.

Figure 3La pyrale des dattes Ectomyelois ceratoniae (AZEB ATHMAN et al.,2015)
Figure 3La pyrale des dattes Ectomyelois ceratoniae (AZEB ATHMAN et al.,2015)

2- taxonomie :

L’Ectomyelois ceratoniae est une espèce nuisible car elle vit sur le fruit mur ou proche de la maturité aux quels cause des dégâts considérables. (BALACHOWSKY, 1972).

Tableau 3Classification pyrale de datte (Ectomyelois ceratoniae)

Embranchement Arthropodes.
Sous embranchement. Mandibylates
Classe Insectes.
Ordre Lépidoptères.
Famille Pyralidées.
Sous famille Phycitinées.
Genre Ectomyelois.
Espèce Ectomyeloisceratoniae zeller (1839)

3- Répartition géographique :

D’après LE BERRE (1978), L‘Ectomyelois ceratoniaeest une espèce répandue dans tout le bassin méditerranéen. Elle est connue au Maroc, Algérie, Tunisie, Libye, Egypte. Sa présence a aussi été signalée en Espagne, Italie, Grèce et France.(DOUMANDJI, 1981) à mentionner la présence de deux zones de multiplication en Algérie. La première, une bordure littorale de 40 à 80 Km de large, s’allongeant sur près de 1000 Km. La seconde constituée par l’ensemble des oasis dont les plus importantes constituées le long du Sud- Est.

4-  Description morphologique : 

4-1- L’œuf :

L’œuf possède une forme oblongue dont la dimension la plus grande est de 0.6 à 0.8 mm. Blanc au début, il acquiert une coloration rose au bout de 24 heures. Il est entouré par une cuticule translucide (DOUMANDJI, 1981). Sa surface présente un aspect réticulé. (LE BERRE, 1978), rapporte qu’il y a un léger aplatissement qui peut se manifester au niveau de la zone d’adhérence au substrat.(HADDOU,2005).

4-2- La larve :

Ce sont des larves éruciformes, de couleur rose ou d’un blanc – jaunâtre avec une tête brune (Photo N° 01). En fait, la teinte du corps dépend de la nature du fruit (DOUMANDJI, 1981). La croissance se fait par mues successives au cours desquelles la longueur des chenilles augmente. Selon LE BERRE (1978), la longueur et de 18 mm avec une largeur de 0.1 à 3 mm.(DOUMANDJI, 1981), estime que la chenille à son dernier stade larvaire peut atteindre 12 à 15 mm de long sur 1 à 1.5 mm de diamètre. Le corps de la chenille d’Ectomyelois ceratoniae est constitué de 12 segments en plus du segment céphalique ; les segments thoraciques portent les trois paires de pattes locomotrices, et les segments abdominaux présentent les quatre paires de fausses pattes ou ventouses. Le premier segment thoracique porte deux plaques dorsales chitineuses de couleur brune – claire. Le segment céphalique est protégé par deux plaques chitineuses. Les segments somatiques suivants ne sont pas pigmentés. Les deux stigmates trachéens de chaque segment s’ouvrent latéralement et chaque segment porte six longues soies souples implantées au niveau d’une cupule. Le dernier segment porte une plaque dorsale chitineuse de couleur brun clair(LE BERRE, 1978).

4-3- La nymphe :

Elle mesure environ 8 mm de longueur et possède un corps de forme cylindro-conique (DOUMANDJI, 1981). Son enveloppe chitineuse de couleur brune testacée est entourée par un fourreau de soie lâche tissé par la chenille avant sa mue nymphale (LE BERRE, 1978). La chrysalide est orientée de telle façon que sa partie céphalique se trouve en contact avec un orifice ménagé par la larve dans la paroi du fruit avant sa mue et par lequel sortira l’imago.(HADDOU,2005).

Figure 4Datte infestées (ORIGINAL, 2016) 
Figure 4Datte infestées (ORIGINAL, 2016)
Figure 5 Larve de la pyrale de datte (NAKES, 2009)
Figure 5 Larve de la pyrale de datte (NAKES, 2009)
Figure 6L‟Adulte d‟Ectomyelois ceratoniae Zeller. (NAKES, 2009) 
Figure 6 L’Adulte d’Ectomyelois ceratoniae Zeller. (NAKES, 2009)
Figure 7 parasites d‟Ectomyelois ceratoniae Zeller (NAKES, 2009) A - Bracon hebetor mâle, B- femelle
Figure 7 parasites d’Ectomyelois ceratoniae Zeller (NAKES, 2009) A – Bracon hebetor mâle, B- femelle

4-4- Adulte :

C’est un papillon de 6 à 14 mm de longueur et d’une envergure de 24 à 26 mm, dans l’ensemble les mâles sont plus petits que les femelles (9.32 mm contre 10.35 mm). Sa face dorsale présente une coloration qui varie du blanc crème au gris foncé avec des mouchetures sombres plus au moins marquées sur les ailes antérieures. La face inférieure et les pattes sont de couleur claire (blanc ou gris uniforme). Les ailes sont bordées de longues soient claires à leur partie postérieure. La ne rvulation est un critère morphologique de différenciation entre le genre Ectomyeloiset Ephestia. Selon LE BERRE (1978), les nervures M2 et M3 qui sont confondues chez Ephestia sont individualisées chez Ectomyelois.

Les antennes sont semblables dans les deux sexes et sont constituées de segments filiformes. L’œil composé est de grande dimension. Il est fortement bombé, très sombre ou noir. La trompe est fonctionnelle et mesure environ 2.5 fois le diamètre de l’œil. La femelle présente une bourse copulatrice ovulaire avec un long et étroit canal copulateur et un signum ovale muni de fines petites dents (WEIDNER et RACK, 1984).

5-  Cycle biologique :

L’Ectomyelois ceratoniae est une micro lépidoptère, qui accompli son cycle biologique par le passage de différents stades : adulte, œuf, chenille, Nymphe. D’après, IDDER (1984) les émergences des adultes ont lieu dans la première partie de la nuit. Les papillons s’accouplent à l’air libre ou même à l’intérieure des enclos où ils sont nés sans avoir besoin de voleter au préalable. La copulation est relativement longue, elle dure plusieurs heures (WERTHEIMER, 1958). Une femelle émet en moyenne de 60 à 120 œufs sur le fruit même, les œufs éclosent trois à quatre jours après cette pente (LE BERRE, 1978). Selon (WERTHEIMER, 1958), la chenille néonate aussitôt après sa naissance, cherche un abri et de la nourriture. Elle fore des trous et creuse une galerie et se localise entre la pulpe et les noyaux. Cet orifice, de petite taille, est bouché par un réseau soyeux blanchâtre. La croissance des chenilles se fait par mues successives, elle dure suivant la température ambiante de 6 semaines à 8 mois (VILARDIBO, 1975). Lorsqu’elle atteint sa taille maximale, le fruit dans lequel elle se trouve est très attaqué, sa pulpe est remplacée par des excréments, des fils de soie et des capsules, reliquat des différentes mues. La chenille du dernier stade tisse un cocon soyeux et elle se transforme en nymphe qui présente toujours la tête tournée vers l’orifice qui se situe au niveau du pédoncule operculé par de la soie. Ainsi, au moment de l’émergence, le papillon n’aura à fournir qu’un léger effort pour s’échapper (DOUMANDJI-MITICHE, 1977). D’après LEPIGRE (1963), la nymphose à une durée indéterminée. L’imago qui en résulte à une durée de vie de 3 à 5 jours pendant laquelle il va s’accoupler et pondre. Il est extrêmement rare de trouver dans la même dattier deux larves d’Ectomyelois ceratoniae, cela est dû au phénomène de cannibalisme qui caractérise cette espèce (LE BERRE, 1978).

Figure 8Cycle biologique d'Ectomyelois ceratoniae(DOUMANDJI-MITICHE, 1983)
Figure 8Cycle biologique d’Ectomyelois ceratoniae(DOUMANDJI-MITICHE, 1983)
 Figure 9Dernier stade larvaire (DHOUIBI,1982)
Figure 9Dernier stade larvaire (DHOUIBI,1982)

6-  Les dégâts :

Les dégâts sont généralement causés par les larves de cet insecte, et qui déprécient la qualité des dattes.IL peuvent ainsi atteindre un pourcentage allant de 20 à 30% de la production totale. Cela peut avoir d graves conséquences sur l’ensemble du processus de commercialisation ; car les normes d’exportation exigées sont de plus en plus sévères, notamment en qui concerne ce déprédateur (ABDELMOUTALIB,2009).

7-  Moyens de luttes :

Le ver de la datte constitue jusqu’à ce jour une contrainte pour l’exportation des dattes surtout de qualité. Il existe plusieurs types de luttes contre ce déprédateur ; lutte préventive, lutte curative (chimique, biologique, radiologique …) et une lutte intégrée.(HADDOU,2005).

7-1- La lutte préventive :

Cette lutte se base surtout sur l’entretien et la conduite de la palmeraie, par le ramassage et l’élimination des fruits abandonnés et infestés sur le palmier dattier (cornaf, couronne, cœur) et au niveau du sol, aussi le nettoyage des lieux de stockage des restes des récoltes précédentes. L’utilisation d’un film de olyéthylène autour des régimes peut empêcher les pontes d’Ectomyelois ceratoniae. (HADDOU,2005)

7-2- La lutte curative :

7-2-1- La lutte chimique :

LEPIGRE (1961), a fait un traitement de DDT à 10%, les résultats de cette lutte ont montré un pourcentage d’efficacité de 67%, mais son inconvénient est que les dattes molles fixent fortement l’insecticide. Ce produit chimique a été interdit durant les années 1970. TOUTAIN (1972), a utilisé des fumigènes au niveau des stocks, mais cette méthode n’a pas montré une grande efficacité. L’inconvénient c’est qu’elle laisse les cadavres à l’intérieur des dattes. En Tunisie, DHOUIBI (1989) cité par HADDAD (2000), a signalé l’utilisation d’autres insecticides qui coûtent très chers, tel que le Malation à 2%, le Paration à 1.25%, et le Phasalon à 4%, et qui ont donné des bons résultats. KNIPLING (1962) cité par DRIDI et al (2000), a proposé une méthode de lutte chimique qui se base sur l’utilisation des chimio stérilisants qui provoquent une stérilisation totale des mâles. Théoriquement cette méthode a donné des bons résultats. Généralement la période d’intervention par des insecticides chimiques est au mois de juillet – août jusqu’à septembre (stade Bser – prés récolte) par trois traitements dont le premier et le deuxième peuvent être mixtes (Boufaroua \ Myelois). Actuellement aucun produit chimique n’est accepté par les pays importateurs de dattes. Seules les luttes biologiques sont autorisées.

7-2-2- La lutte biologique :

 Actuellement la lutte biologique semble la plus efficace, elle a connu une grande extension surtout dans les pays  européens et  quelques pays asiatiques tels que le Japon (FREMY, 2000). Il s’agit de détruire les insectes nuisibles par l’utilisation de leurs ennemis naturels (DOUMANDJI-MITICHE, 1983 ; DOUMANDJI,1981), a donné une liste des prédateurs et des parasites d’Ectomyeloisceratoniae. Les espèces les plus utilisées en lutte biologique appartiennent à la famille des hyménoptères Phanerotoma flavitestacea Fusch comme des oparasites (introduisent leurs œufs dans les pontes d’Ectomyeloisceratoniae), et Bracon hebetorqui parasite les chenilles. Des essaies de lâchers de Trichogramma embryophagum ont été entrepris dans la palmeraie de Ouargla par (IDDER, 1984). Les résultats sont satisfaisants, le taux de parasitisme des œufs d’Ectomyelois ceratoniae par les Trichogrammes atteint jusqu’à 19.35%.

7-2-3- La lutte radio biologique

 Cette lutte se base sur l’utilisation des radiations pour provoquer la mort ou la stérilité d’Ectomyeloisceratoniae.(BENADDOUN,1987), a appliqué cette lutte radio biologique par l’utilisation des radiations Gamma sur des dattes stockées. Chaque dose de rayon entraîne un taux de mortalité de déprédateur (4000 rads pour La mort de 40 % des prénymphes, et 6000 rads pour une mortalité de 80 % des prénymphes). La dose létale (8604 rads) entraîne la mortalité totale des chenilles du dernier stade. D’autre utilisation de cette lutte radio biologique se réalise par la technique des insectes stériles (T I S).

L’application a été testée par DRIDI et al (2000), au niveau des palmeraies de Biskra, cette technique consiste à faire irradier des nymphes des mâles avec une source de cobalt 60, la dose utilisée est 250 GY. L’irradiation va provoquer la stérilité des mâles, mais ils gardent tout leur potentiel d’activité sexuelle. Leur accouplement entraîne de la part des femelles des pontes stériles.

Source:

AMARNI, Abdelhamid et BEN AOUALI, Ameur 2017 . Evaluation des propriétés des antioxydants chez deux plantes médicinales (Allium sativum et Artemisia herba.alba ) et leur influence sur la pyrale des dattes ( Ectomyelois ceratoniae Zeller., 1839 ) .

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